Vernetzung (Chemie)

Polymere vor und nach einer Vernetzung

Vernetzung bezeichnet in der makromolekularen Chemie Reaktionen, bei denen eine Vielzahl einzelner Makromoleküle zu einem dreidimensionalen Netzwerk verknüpft werden. Die Verknüpfung kann entweder direkt beim Aufbau der Makromoleküle oder durch Reaktionen an bereits bestehenden Polymeren erreicht werden.

Vernetzung über Schwefelbrücken: Schematische Präsentation von zwei Polyisoprenketten (blau und grün) nach der Vulkanisation von Naturkautschuk mit Schwefel (n = 0, 1, 2, 3 …).

Durch den Prozess der Vernetzung verändern sich die Eigenschaften der vernetzten Stoffe. Allgemein wird eine Erhöhung der Härte, der Zähigkeit, des Schmelzpunktes und eine Absenkung der Löslichkeit beobachtet. Die Veränderung nimmt mit dem Vernetzungsgrad, dem Anteil der vernetzten Stellen bezogen auf die Gesamtpolymermenge, zu. Ein Vernetzungsmittel (engl. cross-linker) zeichnet sich durch mindestens zwei reaktive Gruppen aus. Vernetzer mit zwei gleichen reaktiven Gruppen werden als homobifunktionelle Vernetzer bezeichnet, solche mit zwei unterschiedlichen Gruppen dagegen als heterobifunktionelle Vernetzer.

Anwendungen

Beispiele für direkt vernetzende Reaktionen sind radikalische Polymerisationen von Monomeren mit zwei Vinylfunktionen oder die Polykondensation oder Polyaddition unter Einsatz von Monomeren mit zwei oder mehr Funktionalitäten (z. B. bei Bakelit). Die Vernetzung bereits bestehender Polymere wird auch als Quervernetzung bezeichnet und kann entweder über bereits im Polymer vorhandene Funktionalitäten durch geschickte Wahl der Reaktionsbedingungen erfolgen (sog. Selbstvernetzer), oder durch den Zusatz von multifunktionellen, niedermolekularen Substanzen, den Vernetzungsmitteln, bewerkstelligt werden. Je nach Vernetzungsgrad entstehen durch Vernetzung von Polymeren zuerst Elastomere und bei zunehmender Vernetzung auch Duroplasten.

Beispiele für den Einsatz von Vernetzungsmitteln sind die Zugabe schwefelhaltiger Stoffe bei der Vulkanisation von Kautschuk^[1] oder das Härten von Epoxidharzen mit Aminen.

In der Biochemie wird bei der Polyacrylamid-Gelelektrophorese Methylen-Bisacrylamid als homobifunktioneller Vernetzer des Acrylamids eingesetzt. In der Affinitätschromatographie, den Pulldown-Assays (z. B. der Immunpräzipitation) und der Größenausschlusschromatographie wird mit Epichlorhydrin quervernetztes Dextran oder Agarose eingesetzt.^[2]^[3]^[4] Saccharose-Epichlorhydrin-Copolymere unterschiedlicher Molmassen-Verteilungen werden bei der Dichtegradientenzentrifugation von Blut zur Isolierung der darin enthaltenen Leukozyten verwendet (unter Markennamen wie Ficoll oder Histopaque).

Proteine

Kollagenfasern im Leder sind ohne Quervernetzung beweglicher und abbaubarer

Biochemische Analytik

Ebenso können Protein-Protein-Interaktionen und Quartärstrukturen von Proteinen durch eine Vernetzung kovalent fixiert werden, so dass eine nachfolgende Auftrennung per Größenausschlusschromatographie oder auch unter den denaturierenden Bedingungen einer SDS-PAGE mit einer Identifizierung per Western-Blot oder MALDI-TOF erfolgen kann. Hierzu werden z. B. Amine von Lysin- oder Arginin-Seitenketten durch Zugabe von Glutaraldehyd, oder auch N-hydroxy-Succinimid-, Sulfosuccinimid- oder anderen Succinimidylestern vernetzt, während die Sulfhydrylgruppen von Cystein-Seitenketten durch Disulfide oder Maleimid-Ester modifiziert werden können.

Auch photoreaktive Moleküle (z. B. Arylazide, Diazirine) können als eine der reaktiven Gruppen eines Vernetzers bei Proteinen verwendet werden, um den Zeitpunkt der Vernetzung besser steuern zu können, da die Vernetzung erst mit UV-Bestrahlung ausgelöst wird. Aufgrund der geringeren Selektivität der radikalischen Vernetzer wird oftmals die Funktionsfähigkeit des Proteins durch Reaktion des radikalischen Vernetzers mit wichtigen Funktionen (z. B. ein aktives Zentrum oder eine Bindungsstelle) gemindert. Daher werden photoreaktive Vernetzer meistens eingesetzt, wenn keine oder nur eine Amin- oder Sulfhydrylgruppe zur selektiven Vernetzung zur Verfügung steht oder eine anschließende Funktionsfähigkeit unerheblich ist.

Es existieren auch photoreaktive Diazirin-enthaltende Analoga der Aminosäuren Leucin, Methionin und p-Benzoyl-Phenylalanin, die bereits während der Translation in vivo in das Protein eingebaut werden können.^[5]

Immobilisierung

→ Hauptartikel: Immobilisierung (Biotechnologie)

Oftmals wird die biologische Halbwertszeit eines Proteins bei einer Vernetzung erhöht, durch eine Erhöhung der Thermostabilität und eine Minderung der Denaturierung (aufgrund der Stabilisierung) sowie eine Minderung der Proteolyse (aufgrund der reduzierten Zugänglichkeit für Proteasen).

Histologie und Taxidermie

Die Vernetzung von Proteinen wird in der Histologie und Taxidermie zur Fixierung von Geweben verwendet, eine Aufhebung der Vernetzung bei der Fixierung wird als Antigendemaskierung bezeichnet.

Leder

Die Vernetzung von Proteinen wird industriell im Zuge der Gerbung von Leder z. B. bei der Glutaraldehyd- oder der Fettgerbung (synonym Sämischgerbung) genutzt. Die Vernetzung von biogenen Lipiden mit Proteinen wird aufgrund des charakteristischen Geruchs nur bei der Fettgerbung von Leder eingesetzt.

Haare und Dauerwelle

In der Natur gibt es eine Vernetzung von Proteinketten über die Disulfidbrücken der Aminosäure Cystin z. B. im Keratin (Haare). Eine Dauerwelle ist chemisch (a) der Bruch dieser Disulfidbrücken durch ein Reduktionsmittel und nach der Änderung der makroskopischen Anordnung der Haare (b) das erneute Vernetzen über Disulfidbrücken durch eine Oxidation.

Lipide

Daneben sind weniger selektive radikalische Vernetzungsreaktionen möglich, wie sie z. B. bei mehrfach ungesättigten Fetten (v. a. in Leinöl, Mohnöl, Sojaöl, Holzöl oder Fischöl) im Verlauf des Verranzens natürlich vorkommen und zur Verharzung führen können. Diese Öle werden in der Lackherstellung auch gelegentlich fälschlicherweise als trocknende Öle bezeichnet, sind jedoch quervernetzend. Die Vernetzung von biogenen Lipiden wird aufgrund des charakteristischen Geruchs nur noch beim Leinölfirnis zur Imprägnierung von Holz, als Leinölfarbe und bei der Fettgerbung von Leder eingesetzt.

Beispiele vernetzter Stoffe

Einzelnachweise

↑ Fritz Röthemeyer, Franz Sommer: Kautschuktechnologie, Carl Hanser Verlag München Wien, 2. Auflage, 2006, S. 304-310, ISBN 978-3-446-40480-9.
↑ A. Tiselius, J. Porath, P. A. Albertsson: Separation and fractionation of macromolecules and particles. In: Science (1963), Bd. 141(3575), S. 13-20. PMID 13985156.
↑ J. Porath, R. Axén: Immobilization of enzymes to agar, agarose, and Sephadex supports. In: Methods Enzymol. (1976), Bd. 44, S. 19-45. PMID 1021680.
↑ J. Porath, E. B. Lindner: Separation methods based on molecular sieving and ion exclusion. In: Nature (1961), Bd. 191, S. 69-70. PMID 13737223.
↑ M. Suchanek, A. Radzikowska, C. Thiele: Photo-leucine and photo-methionine allow identification of protein–protein interactions in living cells. In: Nature Methods. 2, Nr. 4, 2005, S. 261–268. doi:10.1038/nmeth752. PMID 15782218.

[Röthemeyer-1] Fritz Röthemeyer, Franz Sommer: Kautschuktechnologie, Carl Hanser Verlag München Wien, 2. Auflage, 2006, S. 304-310, ISBN 978-3-446-40480-9.

[2] A. Tiselius, J. Porath, P. A. Albertsson: Separation and fractionation of macromolecules and particles. In: Science (1963), Bd. 141(3575), S. 13-20. PMID 13985156.

[3] J. Porath, R. Axén: Immobilization of enzymes to agar, agarose, and Sephadex supports. In: Methods Enzymol. (1976), Bd. 44, S. 19-45. PMID 1021680.

[4] J. Porath, E. B. Lindner: Separation methods based on molecular sieving and ion exclusion. In: Nature (1961), Bd. 191, S. 69-70. PMID 13737223.

[5] M. Suchanek, A. Radzikowska, C. Thiele: Photo-leucine and photo-methionine allow identification of protein–protein interactions in living cells. In: Nature Methods. 2, Nr. 4, 2005, S. 261–268. doi:10.1038/nmeth752. PMID 15782218.

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